Maladie de carré (Ac) - IF
Maladie « historique » pratiquement éradiquée à laquelle on ne pense pas toujours en présence des symptômes typiques ou bien souvent atypiques.
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1. Définition
Maladie due à un virus de la famille des Paramyxoviridae, du genre Morbillivirus (analogue au virus de la rougeole) Espèces sensibles : tous les Canidés, Mustélidés, Félidés.
Transmission :
- Contamination directe par les animaux malades, leurs sécrétions
- Pénétration nasale voire orale
Pathogénie :
- Inoculation des virus
- Réplication primitive au niveau de l'oropharynx, dans les macrophages
- Incubation vraie = 3 - 7 jours
- Phase d'invasion = virémie et dissémination dans l'organisme par les leucocytes - hyperthermie en plateau pendant 14 jours
- Réplication secondaire dans les épithéliums : silence clinique : 14 - 18 j
- Phase d'inflammation épithéliale puis surinfections = phase d'état
Vice Rédhibitoire :
- Délai de rédhibition = 30 jours
- Délai de garantie = 8 jours Diagnostic de certitude sur animal vivant = 4 signes cliniques au moins avec une évolution sur 2 - 3 semaines + examens complémentaires
- Diagnostic de certitude sur animal mort = histologie sur les poumons, vessie, partie proximale de la moelle épinière + sérum, calque cornéen, muqueuse digestive, LCR.
2. Diagnostic clinique
Surtout chez les jeunes, et les animaux non vaccinés
Existence de 4 signes d'atteinte épithéliale présents sur une courte période dans un contexte épidémiologique probable :
- Hyperthermie (fièvre) persistante
- Catarrhe oculo-nasal
- Signes oculaires: sécheresse, larmoiement
- Signes digestifs : diarrhée, vomissements
- Signes nerveux : encéphalites, convulsions, Myoclonies
- Signes respiratoires : toux, dyspnée, jetage muco-purulent, épiphora purulent
- Signes cutanés : éruption pustuleuse, érythème, épaississement des coussinets plantaires
- Autres signes cliniques : avortement, mortinatalité, coloration jaune-brûnatre des dents, cardiomyopathies ...
3. Diagnostic biologique
Choix d'une technique de diagnostic en fonction de l'évolution clinique et du statut de l'animal.
Evolution < 10 - 15 jours
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Animal non vacciné |
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Technique |
Prélèvements |
Fiabilité et délai d'obtention |
Interprétation des résultats |
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Sérologie |
Sang sur tube hépariné (ou sec) |
+ à ++ 24 h à 8 jours |
Faux négatifs fréquents : début d'évolution, forme suraiguë |
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PCR |
Sang sur tube EDTA Urines, LCR, cellules conjonctivales, reins ... |
+++ 4 - 10 jours |
Faux positifs possible car méthode très (trop ?) sensible et contamination de l'environnement possible par d'autres animaux |
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Animal vacciné |
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Sérologie : 2 fois à 15 jours d'intervalle |
Sang sur tube hépariné (ou sec) |
+ 3 semaines au moins |
A éviter si primovaccination récente Mise en évidence d'une séroconversion conclusion |
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PCR |
Sang sur tube EDTA Urines, LCR ... |
+++ 4 - 10 jours |
A éviter si primovaccination depuis moins d'1 mois ou demander un résultat quantitatif car vaccin vivant |
Evolution > 15 jours ou formes nerveuses
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Animal non vacciné |
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Technique |
Prélèvements |
Fiabilité et délai d'obtention |
Interprétation des résultats |
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Sérologie (IgG +/- IgM) |
Sang sur tube hépariné (ou sec) |
++ 24 h à 8 jours |
- Si résultat négatif sans immunodépression recherche d'Ac dans le LCR |
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PCR |
- Sang sur EDTA ou LCR |
+++ 4 - 10 jours |
Si évolution d'une forme nerveuse sur plus d'1 mois faire recherche sur LCR |
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Animal vacciné |
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Sérologie |
Sang sur tube hépariné (ou sec) LCR |
+ 24 h à 8 jours |
Associer à un dosage des Ac anti-parvovivus Résultat négatif pas de conclusion |
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PCR |
Sang sur tube EDTA, LCR ... |
+++ 4 - 10 jours |
Faire une recherche sur sang et LCR pour les formes nerveuses d'évolution > 1 mois |
Nécropsie recherche des corps de Lentz dans les épithéliums bronchique et vésical
Recherche des corps de Lentz sur animal vivant :
- sang : hématies, lymphocytes
- calque cornéen ou raclage conjonctival, épithélium cornéen
- prise d'urines, culot urinaire
